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Gattung Actinemys
Actinemys marmorata – Pazifische Sumpfschildkröte
Actinemys pallida – Kalifornische Sumpfschildkröte
Gattung Astrochelys
Astrochelys radiata – Strahlenschildkröte
Astrochelys yniphora – Madagassische Schnabelbrustschildkröte
Gattung Caretta
Caretta caretta – Unechte Karettschildkröte
Gattung Centrochelys
Centrochelys sulcata – Spornschildkröte
Gattung Chelodina – Australische Schlangenhalsschildkröten
Chelodina longicollis – Glattrückige Schlangenhalsschildkröte
Chelodina mccordi – McCords Schlangenhalsschildkröte
Gattung Chelonia – Grüne Meeresschildkröten
Chelonia mydas – Grüne Meeresschildkröte
Gattung Chelonoidis
Chelonoidis carbonaria – Köhlerschildkröte
Chelonoidis chilensis – Argentinische Landschildkröte
Chelonoidis denticulata – Waldschildkröte
Chelonoidis nigra – Galapagos-Riesenschildkröte
Gattung Chelydra – Schnappschildkröten
Chelydra serpentina – Schnappschildkröte
Gattung Chelus – Fransenschildkröten
Chelus fimbriatus – Fransenschildkröte
Gattung Chersina
Chersina angulata – Afrikanische Schnabelbrustschildkröte
Gattung Chrysemys – Zierschildkröten
Chrysemys picta – Zierschildkröte
Gattung Clemmys
Clemmys guttata – Tropfenschildkröte
Gattung Cuora – Scharnierschildkröten
Cuora cyclornata – Vietnamesische Dreistreifen-Scharnierschildkröte
Cuora mccordi – McCords Scharnierschildkrote
Cuora picturata – Südvietnamesische Scharnierschildkröte
Cuora trifasciata – Chinesische Dreistreifen-Scharnierschildkröte
Cuora zhoui – Zhous Scharnierschildkröte
Gattung Dermochelys
Dermochelys coriacea – Lederschildkröte
Gattung Emydoidea
Emydoidea blandingii – Amerikanische Sumpfschildkröte
Gattung Emydura – Spitzkopfschildkröten
Emydura macquarii – Breitrand-Spitzkopfschildkröte
Emydura subglobosa – Rotbauch-Spitzkopfschildkröte
Gattung Emys
Emys orbicularis – Europäische Sumpfschildkröte
Emys orbicularis galloitalica – Mittelländische Sumpfschildkröte
Gattung Eretmochelys
Eretmochelys imbricata – Echte Karettschildkröte
Gattung Geochelone
Geochelone elegans – Indische Sternschildkröte
Geochelone platynota – Burma-Sternschildkröte
Gattung Geoemyda – Zacken-Erdschildkröten
Geoemyda spengleri – Chinesische Zacken-Erdschildkröte
Gattung Glyptemys – Amerikanische Wasserschildkröten
Glyptemys insculpta – Waldbachschildkröte
Glyptemys muhlenbergii – Moorschildkröte
Gattung Gopherus – Gopherschildkröten
Gopherus agassizii – Kalifornische Gopherschildkröte
Gattung Graptemys – Höckerschildkröten
Graptemys pseudogeographica – Falsche Landkarten-Höckerschildkröte
Gattung Homopus – Flachschildkröten
Homopus boulengeri – Boulengers Flachschildkröte
Homopus femoralis – Sporn-Flachschildkröte
Homopus signatus – Gesägte Flachschildkröte
Gattung Indotestudo – Asiatische Landschildkröten
Indotestudo elongata – Gelbkopfschildkröte
Gattung Kinixys – Gelenkschildkröten
Kinixys belliana nogueyi – Westafrikanische Glattrandgelenkschildkröte
Kinixys homeana - Stutz-Gelenkschildkröte
Kinixys lobatsiana – Lobatse-Gelenkschildkröte
Kinixys natalensis – Natal-Gelenkschildkröte
Kinixys spekii – Spekes Gelenkschildkröte
Kinixys zombensis – Südostafrikanische Gelenkschildkröte
Gattung Kinosternon – Klappschildkröten
Kinosternon cruentatum – Rotwangen-Klappschildkröte
Gattung Leucocephalon
Leucocephalon yuwonoi – Sulawesi-Erdschildkröte
Gattung Malaclemys
Malaclemys terrapin – Diamantschildkröte
Gattung Malacochersus
Malacochersus tornieri – Spaltenschildkröte
Gattung Manouria – Asiatische Waldschildkröten
Manouria impressa – Hinterindische Waldschildkröte
Gattung Mauremys – Bachschildkröten
Mauremys leprosa – Maurische Bachschildkröte
Mauremys reevesii – Chinesische Dreikielschildkröte
Mauremys rivulata – Westkaspische Schildkröte
Mauremys sinensis – Chinesische Streifenschildkröte
Gattung Myuchelys
Myuchelys georgesi – Bellinger-Schnappschildkröte
Gattung Platysternon
Platysternon megacephalum – Großkopfschildkröte
Gattung Pelomedusa – Starrbrust-Pelomedusen
Pelomedusa subrufa – Starrbrust-Pelomeduse
Gattung Podocnemis – Schienenschildkröten
Podocnemis erythrocephala – Rotkopf-Schienenschildkröte
Podocnemis expansa – Arrauschildkröte
Podocnemis unifilis – Terekay-Schienenschildkröte
Gattung Pseudemys – Echte Schmuckschildkröten
Pseudemys nelsoni – Florida-Rotbauch-Schmuckschildkröte
Gattung Psammobates – Südafrikanische Landschildkröten
Psammobates tentorius verroxii – Nördliche Höcker-Landschildkröte
Gattung Pyxis – Spinnenschildkröten
Pyxis arachnoides – Madagassische Spinnenschildkröte
Gattung Rhinoclemmys – Amerikanische Erdschildkröten
Rhinoclemmys pulcherrima manni – Costa-Rica-Pracht-Erdschildkröte
Rhinoclemmys rubida perixantha – Colima-Erdschildkröte
Gattung Siebenrockiella
Siebenrockiella leytensis – Philippinen-Erdschildkröte
Gattung Sacalia – Pfauenaugen-Sumpfschildkröten
Sacalia quadriocellata – Vietnamesische Pfauenaugen-Sumpfschildkröte
Gattung Sternotherus – Moschusschildkröten
Sternotherus minor – Kleine Moschusschildkröte
Gattung Stigmochelys – Pantherschildkröten
Stigmochelys pardalis – Pantherschildkröte
Gattung Terrapene – Dosenschildkröten
Terrapene carolina – Carolina-Dosenschildkröte
Terrapene ornata – Schmuck-Dosenschildkröte
Gattung Testudo – Eigentliche Landschildkröten
Testudo graeca – Maurische Landschildkröte
Testudo hermanni boettgeri – Griechische Landschildkröte
Testudo hermanni hermanni – Italienische Landschildkröte
Testudo marginata – Breitrandschildkröte
Gattung Trachemys – Buchstaben-Schmuckschildkröten
Trachemys scripta elegans – Rotwangen-Schmuckschildkröte
Trachemys venusta – Mittelamerikanische Schmuckschildkröte
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Temperaturabhängige Geschlechtsausprägung, TSD
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Bowden - 2018 - 01
Bowden, R. M. & R. T. Paitz
(2018): Temperature fluctuations and maternal estrogens as critical factors for understanding temperature-dependent sex determination in nature. – Journal of Experimental Zoology Part A Ecological Genetics and Physiology 329(4-5): 177-184.
Temperaturschwankungen und mütterliche Östrogene als entscheidende Faktoren für das Verständnis der temperaturabhängigen Geschlechtsbestimmung in der
...
Carter - 2018 - 01
Carter, A. W., B. M. Sadd, T. D. Tuberville, R. T. Paitz & R. M. Bowden
(2018): Short heat waves during fluctuating incubation regimes produce females under temperature-dependent sex determination with implications for sex ratios in nature. – Scientific Reports 8(1): 3.
Kurze Hitzewellen während einer fluktuierenden Inkubationstemperatur produzieren Weibchen bei einer Temperatur-abhängigen Geschlechtsbestimmung und das hat
...
Carter - 2019 - 01
Carter, A. L., B. L. Bodensteiner, J. B. Iverson, C. L. Milne-Zelman, T. S. Mitchell, J. M. Refsnider, D. A. Warner & F. J. Janzen
(2019): Breadth of the thermal response captures individual and geographic variation in temperature‐dependent sex determination. – Functional Ecology 33(10): 1928-1939.
Die thermische Reaktionsbreite umfasst sowohl individuelle wie geographische Unterschiede bei der temperaturabhängigen
...
Freedberg - 2006 - 03
Freedberg, S., C. E. Nelson & M. A. Ewert
(2006): Estradiol-17 β induces lasting sex reversal at male-producing temperatures in kinosternid turtles. – Journal of Herpetology 40(1): 95-98.
Östradiol-17ß induziert eine bleibende Geschlechtsumwandlung bei Männchen-produzierenden Temperaturen bei kinosterniden Schildkröten.
Ge - 2018 - 01
Ge, C., J. Ye, C. Weber, W. Sun, H. Zhang, Y. Zhou, C. Cai, G. Qian & B. Capel
(2018): The histone demethylase KDM6B regulates temperature-dependent sex determination in a turtle species. – Science 360(6389): 645-648.
Die Histondemethylase KDM6B reguliert die Temperatur-abhängige Geschlechtsausprägung bei einer Schildkrötenart.
Hays - 2017 - 01
Hays, G. C., A. D. Mazaris, G. Schofield & J. O. Laloë
(2017): Population viability at extreme sex-ratio skews produced by temperature-dependent sex determination. – Proceedings of the Royal Society B: Biological Sciences 284(1848): 20162576.
Das Populationsüberleben bei extremer Verschiebung des Geschlechterverhältnisses durch temperaturabhängige Geschlechtsausprägung
Hernández-Montoya - 2017 - 01
Hernández-Montoya, V., V. P. Páez & C. P. Ceballos
(2017): Effects of Temperature on Sex Determination and Embryonic Development in the Red-footed Tortoise,
Chelonoidis carbonarius
. – Chelonian Conservation and Biology 16(2): 164-171.
Auswirkungen der Temperatur auf die Geschlechtsausprägung und Embryonalentwicklung bei der Köhlerschildkröte,
Chelonoidis carbonarius
.
Janzen - 2006 - 01
Janzen, F. J. & P. C. Phillips (2006): Exploring the evolution of environmental sex determination, especially in reptiles. – Journal of Evolutionary Biology 19(6): 1775-1784.
Einblicke in die Evolution der umweltinduzierten Geschlechtsentwicklung, insbesondere bei Reptilien
Li - 2018 - 01
Li, T., P. Cao, Y.-J. Bei & W.-G. Du
(2018): Latitudinal and Temperature-Dependent Variation in Embryonic Development Rate and Offspring Performance in a Freshwater Turtle. – Physiological and Biochemical Zoology 91(1): 673-681.
Breitengrad- und Temperatur-abhängige Unterschiede bei der embryonalen Entwicklungsrate und Schlüpflingsbeweglichkeit bei einer Süßwasserschildkröte.
Ligon - 2009 - 02
Ligon, D. B., J. R. Bidwell & M. B. Lovern
(2009): Incubation temperature effects on hatchling growth and metabolic rate in the African spurred tortoise,
Geochelone sulcata
. Canadian Journal of Zoology – Revue Canadienne de Zoologie 87(1): 64–72.
Auswirkungen der Inkubationstemperatur auf das Schlüpflingswachstum und die Metabolismusrate bei der afrikanischen Spornschildkröte Geochelone sulcata.
Massey - 2019 - 01
Massey, M. D., S. M. Holt, R. J. Brooks & N. Rollinson
(2019): Measurement and modelling of primary sex ratios for species with temperature-dependent sex determination. – Journal of Experimental Biology 222(1): 190215.
Die Messung und Modellierung von primären Geschlechterverhältnissen für Spezies mit temperaturabhängiger Geschlechtsausprägung.
Miller - 2004 - 01
Miller, D., J. Summers, & S. Silber
(2004): Environmental versus sex determination: a possible factor in dinosaur extinction? – Fertility and Sterility 81(4): 954-964.
Umweltabhängige versus genetischer Geschlechtsbestimmung: Ein möglicher Faktor für das Aussterben der Dinosaurier?
Mitchell - 2019 - 01
Mitchell, T.S. & F. J. Janzen
(2019): Substrate Influences Turtle Nest Temperature, Incubation Period, and Offspring Sex Ratio in the Field. – Herpetologica 75(1): 57-62.
Das Substrat beeinflusst die Nesttemperatur, die Inkubationszeit und das Geschlechterverhältnis der Schlüpflinge im Feld.
Mork - 2014 - 01
Mork, L., M. Czerwinski & B. Capel
(2014): Predetermination of sexual fate in a turtle with temperature-dependent sex determination. – Developmental Biology 386(1): 264–271.
Vorfestlegung der Geschlechtsausprägung bei einer Schildkröte mit temperaturabhängiger Geschlechtsausprägung.
Pieau - 2004 - 01
Pieau, C. & M. Dorizzi
(2004): Oestrogens and temperature-dependent sex determination in reptiles: All is in the gonads. – Journal of Endocrinology 181(3): 367-377.
Östrogene und die temperaturabhängige Geschlechtsbestimmung bei Reptilien: Alles ist in den Gonaden.
Radhakrishnan - 2017 - 01
Radhakrishnan, S., R. Literman, B. Mizoguchi & N. Valenzuela
(2017): MeDIP-seq and nCpG analyses illuminate sexually dimorphic methylation of gonadal development genes with high historic methylation in turtle hatchlings with temperature-dependent sex determination. – Epigenetics & Chromatin 10: 28.
MeDIP-seq- und nCpG-Analysen zeigen einen Sexualdimorphismus bei der Methylierung von Genen, welche die
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Radhakrishnan - 2018 - 01
Radhakrishnan, S., R. Literman, J. L. Neuwald & N. Valenzuela
(2018): Thermal Response of Epigenetic Genes Informs Turtle Sex Determination with and without Sex Chromosomes. – Sexual Development 12: 308-319.
Thermische Reaktionen an epigenetisch modulierten Genen liefern Informationen zur Geschlechtsausprägung bei Schildkröten mit und ohne Geschlechtschromosomen.
Ramsey - 2008 - 01
Ramsey, M. & D. Crews
(2007): Adrenal-kidney-gonad complex measurements may not predict gonad-specific changes in gene expression patterns during temperature-dependent sex determination in the red-eared slider turtle (
Trachemys scripta elegans
). – Journal of Experimental Zoology Part A: Ecological Genetics and Physiology 307A(8): 463-470.
Nebennieren-Nieren-Gonaden-Komplex-Messungen sagen wahrscheinlich wenig über
...
Ramsey - 2008 - 02
Ramsey, M. & D. Crews
(2008): Steroid signaling and temperature-dependent sex determination – Reviewing the evidence for early action of estrogen during ovarian determination in turtles. – Seminars in Cell and Developmental Biology 20(3): 283-292.
Signalübermittlung durch Steroide und die Temperatur-abhängige Geschlechtsfestlegung: Überblick über die Nachweise für die frühen Wirkungen von Östrogen während der
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Rostal - 2003 - 01
Rostal, D. C., T. Wibbels, R. C. Averill-Murray, E. W. Stitt & D. Riedle
(2003): Temperature-dependent sex determination in North American tortoises,
Gopherus agassizii
and
Gopherus polyphemus
. – Proceedings 28th Annual Meeting and Symposium of the Desert Tortoise Council, February 21-23. online.
Temperaturabhängige Geschlechtsbestimmung bei nordamerikanischen Landschildkröten,
Gopherus agassizii
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Warner - 2011 - 01
Warner, D. A. & R. Shine
(2011): Interactions among thermal parameters determine offspring sex under temperature-dependent sex determination. – Proceedings of the Royal Society B: Biological Sciences 278(1703): 256-265.
Interaktionen zwischen verschiedenen Temperaturparametern bestimmen das Geschlecht der Nachkommen bei der Temperatur-abhängigen Geschlechterfixierung.
Warner - 2017 - 01
Warner, D. A., T. S. Mitchell, B. L. Bodensteiner & F. J. Janzen
(2017): The effect of hormone manipulations on sex ratios varies with environmental conditions in a turtle with temperature-dependent sex determination. – Journal of Experimental Zoology Part A: Ecological and Integrative Physiology 327(4): 172-181.
Die Auswirkungen von hormonellen Manipulationen auf das Geschlechterverhältnis variiert mit den
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Weber - 2020 - 01
Weber, C., Y. Zhou, G. W. Lee, L. L. Looger, G. Qian, C. Ge & B. Capel
(2020): Temperature-dependent sex determination is mediated by pSTAT3 repression of Kdm6b. – Science 368(6488): 303-306.
Die Temperaturabhängige-Geschlechtsentwicklung wird durch pSTAT3-Repression von Kdm6b moduliert.
While - 2018 - 01
While, G. M., D. W.A. Noble, T. Uller, D. A. Warner, J. L. Riley, W.‐G. Du & L. E. Schwanz
(2018): Patterns of developmental plasticity in response to incubation temperature in reptiles. – Journal of Experimental Zoology Part A Ecological Genetics and Physiology 329(4-5): 162-176.
Die Muster der Entwicklungsplastizität als Antwort auf die Inkubationstemperatur bei Reptilien.
Ye - 2019 - 01
Ye, Y. Z., L. Ma, B. J. Sun, T. Li, Y. Wang, R. Shine & W. G. Du
(2019): The Embryos of Turtles Can Influence Their Own Sexual Destinies. – Current Biology 29(16): 2597-2603.
Die Embryonen von Schildkröten können ihr eigenes sexuelles Schicksal beeinflussen.
Zhu - 2006 - 02
Zhu, X.-P., Y.-L. Chen, C.-Q. Wei, Y.-H. Liu & J-F. Giu
(2006): Temperature effects on sex determination in yellow pond turtle (
Mauremys mutica
Cantor
). – Acta Ecologica Sinica 26(2): 620-625.
Temperatureffekte in Bezug auf die Geschlechtsausprägung bei Gelben Sumpfschildkröten (
Mauremys mutica
Cantor
).
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